Структура інституту

Лабораторія біологічно активних сполук«Центр колективного користування»

Положення про Центр

1

Створення Центру Інституту гідробіології НАН України

Гідроекологічний аналітичний центр колективного користування науковими приладами/обладнанням Інституту гідробіології НАН України створено з метою найбільш раціонального використання унікальних та коштовних наукових приладів/обладнання вітчизняного або імпортного виробництва, яке неможливо або недоцільно придбати кожній науковій установі з централізованих коштів, спільних коштів груп установ та організацій, інших джерел фінансування НАН України.

2

Структура, головні завдання і організація роботи

2.1. Гідроекологічний аналітичний центр є складовою Науково-технічного Центру колективного користування науковими приладами та обладнанням з наукового (науково-технічного) напряму, надбанням Національної академії наук України.

2.3. Гідроекологічний аналітичний центр Інституту гідробіології НАН України є науковим підрозділом, підпорядкованим безпосередньо дирекції Інституту без статусу юридичної особи.

2.4. Головним завданням ГАЦ Інституту гідробіології є надання науковцям НАН України можливості проводити дослідження на наукових приладах/обладнанні сучасного рівня, які обслуговуються кваліфікованим персоналом, здатним підтримувати обладнання у високоякісному робочому стані та надавати консультативні послуги.

3

Порядок надання послуг

3.1. Інформація про ГАЦ Інституту гідробіології НАН України міститься на веб-сторінці інституту та на веб-сторінці Президії НАН України.

3.2. Наукові установи та організації НАН України, які мають потреби в проведенні досліджень на науковому обладнанні ГАЦ, два рази на рік до 15 січня і до 15 червня подають у письмовому вигляді до Бюро Відділення загальної біології і ГАЦ ІГБ свої заявки на кількість годин, термін та види досліджень.

3.3. Бюро Відділення загальної біології НАН України за поданням директора Інституту гідробіології НАН України затверджує загальний розподіл між замовниками робочого часу, відведеного для колективного користування науковим обладнанням Центру.

3.5. ГАЦ Інституту гідробіології НАН України встановлює наступний розподіл режиму користування приладами при роботі в одну зміну (8 годин):

10:00 – 13:00для співробітників Інституту гідробіології НАНУ
13:00 – 16:00безкоштовно для інших наукових установ та організацій НАН України

3.6. Платні послуги з використання наукового обладнання ГАЦ надаються згідно з чинним законодавством України.

🔬 У 2022 році заплановано розширення дослідницької сфери ЦКК у напрямі впровадження молекулярно-генетичних методів шляхом придбання приладу для проведення полімеразної ланцюгової реакції SimpliAmp™ Thermal Cycler з системою електрофорезу E-Gel™ Power Snap Electrophoresis System Invitrogen (виробник Thermo Fisher Scientific, США).

Наукове обладнання

🔬

Дослідницький мікроскоп Axio Imager A1 «Карл Цейс» (Німеччина)

Застосування: мікроскоп універсального і прикладного використання в галузі біології і медицини. Відповідає міжнародному стандарту ISO 9000.

Методи мікроскопії:

  • У прохідному світлі — світле поле та дисперсійно-інтерференційний контраст.
  • У відбиваючому світлі — епіфлуоресценція.

Об'єктиви зі збільшенням/числовою апертурою: 2,5×/0,085; 5×/0,15; 10×/0,30; 20×/0,50; 40×/0,75; 63×/0,85; 100×/1,30. Оптична корекція об'єктивів — апохроматична.

Система фільтрів для епіфлуоресценції:

  • Набір №15 — excitation BP 546/12, beamsplitter FT 580, emission LP 590
  • Набір №44 — excitation BP 475/40, beamsplitter FT 500, emission LP 530/50
  • Набір №49 — excitation G 365, beamsplitter FT 395, emission BP 445/50

Система аналізу зображення: цифрова камера AxioCam 506 color (6 Мп) з програмним забезпеченням ZEN 2.6.

⚗️

Автоматизований рідинний хромато-мас-спектрометр Agilent 1200 SL/DAD/FD/MSD 6130

Застосування: визначення якісного та кількісного вмісту полярних нелетких термолабільних та термостабільних органічних сполук — фармацевтичні препарати, фізіологічно активні речовини, водорозчинні пестициди, поліароматичні вуглеводні, харчові домішки та інші токсиканти й сполуки органічного походження — у матрицях різної складності.

Детектори:

  • Діодно-матричний (DAD) — аналіз на декількох довжинах хвиль та реєстрація спектру (190–950 нм)
  • Флуоресцентний (FD) — багатохвильове детектування та оперативна флуоресцентна спектрометрія
  • Мас-селективний одноквадрупольний (MSD 6130) з джерелами іонізації електроспрей (API) та хімічної іонізації (APCI)
Діапазон мас (m/z)2 – 3000
Точність визначення мас±0,13 а.о.м.
Швидкість сканування2500 та 5250 а.о.м./с

Ілюстрації

Дослідницький мікроскоп Axio Imager A1
Дослідницький мікроскоп Axio Imager A1 «Карл Цейс» (Німеччина)
Цитогенетичні методи у біотестуванні
Використання цитогенетичних методів у біотестуванні. Дослідження мітотичного циклу у клітинах апікальної меристеми корінців рослинних тест-об'єктів (фото Л.С. Кіпніс та М.Т. Гончарової)
Функціональна активність клітин
Дослідження функціональної активності клітин. Забарвлення активних ядерце-утворюючих районів хромосом азотнокислим сріблом (фото Ю.О. Стойка)
Видовий склад фітопланктону
Вивчення видового складу фітопланктону. Діатомові водорості Melosira varians, Diatoma vulgare і Navicula tripunctata (фото Н.Є. Семенюк)
Морфологічні характеристики мікроводоростей
Визначення морфологічних характеристик мікроводоростей. Зелена водорість Volvox polychlamys Korshikov (фото Л.П. Ярмошенко)
Паразит Aspidogaster conchicola — прохідне світло
Паразит Aspidogaster conchicola: прохідне світло (фото В.І. Юришинця)
Паразит Aspidogaster conchicola — ДІК
Паразит Aspidogaster conchicola: диференційно-інтерференційний контраст (фото В.І. Юришинця)
Дослідження бактеріопланктону
Дослідження бактеріопланктону. Барвники — Live/dead Baclight viability kit (SYTO 9® та PI) (фото Старосили Є.В.)
Хроматографічні методи
Застосування хроматографічних методів в залежності від властивостей цільових речовин
Джерела іонізації HPLC-MS
Застосування джерел іонізації HPLC-MS для речовин різної полярності і молекулярної маси
Хітинові структури Chironomus riparius
Дослідження морфологічних змін хітинових структур ротового апарату та структурно-функціональних змін у політенних хромосомах слинних залоз Chironomus riparius (фото М.Т. Гончарової)
Онтогенетична мінливість інфузорій
Дослідження онтогенетичної мінливості інфузорій за будовою та кількістю зубців: Trichodina partidisci та Trichodina rostrata (фото В.І. Юришинця)
Таксономічне різноманіття зоопланктону
Дослідження таксономічного різноманіття спільнот зоопланктону: Diaphanosoma mongolianum Ueno, 1938, вперше виявлений в Україні у 2015 р. у водоймі-охолоджувачі Хмельницької АЕС (фото Ю.Ф. Громової)

Обрані публікації

  1. Савлучинська М.О., Коновець І.М., Арсан О.М., Мардаревич М.Г. Особливості енергозабезпечення процесів адаптації риб до різних концентрацій фіпронілу та диметоату у водному середовищі // Наук. зап. Терноп. нац. пед. ун-ту. Сер. Біол. – 2017. – T. 69, №2. – С. 70–75.
  2. Rodriguez R., Vakulenko O., Ralchenko S., Konovets I. et al. Quantification of S-adenosyl methionine and S-adenosyl-homocysteine in human placenta and placental explants under homocysteine treatment // International Journal of Mass Spectrometry. – 2017. – Vol. 421. – P. 279–284. DOI: 10.1016/j.ijms.2017.08.002.
  3. Usenko O.M., Konovets I.N., Tarashchuk O.S., Gorbunova Z.N. Phenolcarbonic acids of the submerged aquatic plants and their effect on phytoepiphyton structure // Hydrobiological Journal. – 2019. – Vol. 55, N 6. – P. 55–64. DOI: 10.1615/HydrobJ.v55.i6.50.
  4. Ho K.T., Konovets I.M., Terletskaya A.V. et al. Contaminants, mutagenicity and toxicity in the surface waters of Kyiv, Ukraine // Marine Pollution Bulletin. – 2020. – Vol. 155. – P. 111153. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2020.111153.
  5. Rodriguez R., Konovets I., Ralchenko S. et al. A low-cost mass spectrometry-based approach for quantifying purines in placental explants // International Journal of Mass Spectrometry. – 2021. – Vol. 460. – Art. 116490. DOI: 10.1016/j.ijms.2020.116490.